Войти в систему | Регистрация
Казахский национальный аграрный исследовательский университет ISSN 2304-3334 (Print)  ·  ISSN 2304-3334 (Online)
Подать статью
Меню
Подать статью
ЗЕМЛЕДЕЛИЕ, АГРОХИМИЯ, КОРМОПРОИЗВОДСТВО, АГРОЭКОЛОГИЯ

ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO

Зарина Юсупова 1 , Тойгуль Нурсейтова 2 , Ирина Ковальчук 2 , Балнур Кабылбекова 2

1 Казахский научно-исследовательский институт плодоовощеводства, Казахский национальный аграрный исследовательский университет, Алматы, Казахстан; 2 Казахский научно-исследовательский институт плодоовощеводства, Алматы, Казахстан

doi.org/10.37884/1-2026/12 Стр. 115-123 Поступила 06.01.2026 Опубликовано 27.02.2026

Аннотация

Введение. Существенное сокращение площадей садов в последние десятилетия связано с воздействием неблагоприятных абиотических факторов и распространением бактериальных патогенов, что привело к обеднению сортимента груши. Быстрое внедрение устойчивых сортов и подвоев в промышленное садоводство ограничено дефицитом качественного посадочного материала. Методы. В работе исследованы особенности клонального микроразмножения семенного подвоя Pyrus pyraster и клоновых подвоев OHxF230 и OHxF69 . Подобран оптимальный режим стерилизации эксплантов и изучено влияние различных концентраций азотных солей (NH₄NO₃ и KNO₃) и регуляторов роста (6-БАП, ИМК, ГК) на эффективность пролиферации побегов. Результаты. Установлено, что при стерилизации эксплантов Pyrus pyraster максимальный процент регенерации (78,57%) достигался при обработке 0,2% раствором HgCl₂ в течение 4 мин, тогда как сокращение времени экспозиции увеличивало уровень контаминации. Оптимальные показатели микроразмножения получены на среде с 75% содержанием нитратного азота, дополненной 6-БАП (0,8 мг/л), ГК (0,5 мг/л) и ИМК (0,1 мг/л). Повышенная концентрация 6-БАП (1,8 мг/л) в сочетании с пониженным уровнем азота снижала эффективность размножения, особенно у Pyrus pyraster, тогда как у подвоя OHxF230 сохранялся относительно высокий коэффициент размножения (2,67 ± 1,15). Выводы. Полученные результаты демонстрируют возможность оптимизации условий культивирования для повышения эффективности микроразмножения подвоев груши и могут быть использованы при разработке биотехнологических протоколов получения посадочного материала в условиях in vitro.

груша подвой Pyrus pyraster микроклональное размножение питательная среда стерилизация in vitro

01 Введение

Полный текст статьи доступен для скачивания в формате PDF на панели справа.

02 Список литературы

  1. Алексенко С., Кадирсизова Ж., Казыбаева С., Касенова Б. (2023). Алматы облысы жағдайына бейімделген интродукцияланған және отандық алмұрт сорттарының шаруашылық-құнды белгілерін бағалау // Izdenister natigeler. 2023. № 3 (99). С. 356-363. https://doi.org/10.37884/3-2023/36
  2. Aygun, A. & Dumanoglu, H. (2015). In vitro shoot proliferation and in vitro and ex vitro root formation of Pyrus elaeagrifolia Pallas. Frontiers in Plant Science, 6, 225. https://doi.org/10.3389/fpls.2015.00225
  3. Brewer L.R. & Palmer J.W. (2010). Global pear breeding programmes: Goals, trends and progress for new cultivars and new rootstocks. Acta Horticulturae, 909, 105-119. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2011.909.10
  4. Claveria, E., Asín, L., Iglesias, I., Vilardell, P., Bonany, J., Simard, M.H., & Dolcet-Sanjuan, R. (2012). In vitro screening for tolerance to iron chlorosis as a reliable selection tool in a pear rootstock breeding program. Acta Horticulturae, 935, 199-205. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2012.935.28
  5. Dyussembekova, D., Nurtaza, A., Magzumov, G., Zhenisbekuly, G. & Kakimzhanova, A. (2025). Development of an in vitro conservation protocol for the endemic species Pyrus regelii. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 162(1), 1-15. https://doi.org/10.31489/2024bmg4/35-43
  6. Исин М.М., Джуманова Ж.К., Жармухамедова Г.А., Куланбай К.Ж. (2018). Сортовая устойчивость яблони и груши к бактериальному ожогу // Защита и карантин растений. 2018. № 12. С. 40–42.
  7. Кабылбекова Б.Ж., Чуканова Н.И., Турдиев Т.Т., Рымханова Н., Ковальчук И. (2019). Оптимизация клонироавния in vitro различных генотипов яблони. Experimental Biology, 80(3), 48-57. https://doi.org/10.26577/eb-2019-3-b5
  8. Ковальчук И.Ю., Кабылбекова Б.Ж., Чуканова Н.И., Турдиев Т.Т., & Фролов С.Н. (2020). Клональное микроразмножение в производстве посадочного материала яблони Казахстана //Вестник Нижегородской государственной сельскохозяйственной академии. 2020. №. 3. С. 5-12. https://vestnik-akademii-2020-3-27.page=5-12
  9. Lordan, J., Blatt, S., Francescatto, P., Embree, C., & Robinson, T. L. (2017). Performance of three Pyrus pear rootstocks in Northeastern North America. Retrieved from https://user-23310503727.cld.bz/Journal-APS-Oct-2017
  10. Mehri-Kamoun R., Polts V., Faïdi A., & Mehri H (2004). Micropropagation of six OHxF (Old Home × Farmingdale) pear rootstocks. Advances in Horticultural Science, 18(2), 1000-1007. https://digital.casalini.it/10.1400/14269
  11. Ou, C., Wang, F., Wang, J., Li, S., Zhang, Y., Fang, M., Ma, L., Zhao, Y., & Jiang, S. (2019). A de novo genome assembly of the dwarfing pear rootstock Zhongai 1. Scientific Data, 6(1), 281. https://doi.org/10.1038/s41597-019-0291-3
  12. Ромаданова Н.В., Кушнаренко С.В. (2021). Биотехнология получения безвирусных саженцев яблони // Вестник Карагандинского университета. Серия: Биология. Медицина. География. 2021. Т. 103. № 3. С. 102-118. DOI: 10.31489/2021BMG3/102-118.
  13. Song, J.Y., Bae, J., Lee, Y.Y., Han, J.W., Lee, Y.J., Nam, S.H., Lee, H.S., Kim, S.C., Kim, S.H., & Yun, B.H. (2024). High-efficiency in vitro root induction in pear microshoots (Pyrus spp.). Plants, 13(14), 1904. https://doi.org/10.3390/plants13141904
  14. Shivran, M., Sharma, N., Dubey, A.K., Singh, S.K., Sharma, N., Sharma, R.M., Singh, N., & Singh, R. (2022). Scion–rootstock relationship: Molecular mechanism and quality fruit production. Agriculture, 12(12), 2036. https://doi.org/10.3390/agriculture12122036
  15. Simard, M.H., Michelesi, J.C., & Masseron, A. (2002). Pear rootstock breeding in France. Acta Horticulturae, 658, 535-540. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2004.658.81
  16. Турдиев Т.Т., Ковальчук И.Ю., Успанова Г.К., Чуканова Н.И., Фролов С.Н. (2015). Оптимизация технологии клонального микроразмножения для сохранения генофонда растений груши (P. communis L.) // Experimental Biology. 2015. Т. 65, № 3. С. 356-362. bb.kaznu.kz/1138
  17. Vercammen, J., Van Daele, G. & Gomand, A. (2006). Search for a more dwarfing rootstock for ‘Jonagold’. Sodininkystė ir daržininkystė, 25(3), 164–172. https://elaba:6213380/6213380
  18. Webster, A.D. (2002). Breeding and selection of apple and pear rootstocks. Acta Horticulturae, 622, 499–512. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2003.622.55
  19. Жумагулова Ж.Б., Кампитова Г.А. (2014). Совершенствование микроклонального размножения различных сортов груши // Ізденістер, исследования, нәтижелер. 2014. № 3. С. 125. https://izdenister.kaznaru.edu.125

Ссылки для цитирования

[1]2026. ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO . Izdenister natigeler. 28, 1(109) (Feb. 2026), 115–123. DOI:https://doi.org/10.37884/1-2026/12.
(1)ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO . Izdenister natigeler 2026, 28 (1(109), 115-123. https://doi.org/10.37884/1-2026/12.
ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO . (2026). Izdenister Natigeler, 28(1(109), 115-123. https://doi.org/10.37884/1-2026/12
ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO . Izdenister natigeler, [S. l.], v. 28, n. 1(109), p. 115–123, 2026. DOI: 10.37884/1-2026/12. Disponível em: https://agrosoil.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/1154. Acesso em: 15 sep. 2026.
“ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO ”. 2026. Izdenister Natigeler 28 (1(109): 115-23. https://doi.org/10.37884/1-2026/12.
“ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO ” (2026) Izdenister natigeler, 28(1(109), pp. 115–123. doi:10.37884/1-2026/12.
[1]“ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO ”, Izdenister natigeler, vol. 28, no. 1(109), pp. 115–123, Feb. 2026, doi: 10.37884/1-2026/12.
“ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO ”. Izdenister Natigeler, vol. 28, no. 1(109), Feb. 2026, pp. 115-23, https://doi.org/10.37884/1-2026/12.
“ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO ”. Izdenister natigeler 28, no. 1(109) (February 27, 2026): 115–123. Accessed September 15, 2026. https://agrosoil.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/1154.
1.ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO . Izdenister natigeler [Internet]. 2026 Feb. 27 [cited 2026 Sep. 15];28(1(109):115-23. Available from: https://agrosoil.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/1154
1.ОПТИМИЗАЦИЯ СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ ПОДВОЕВ ГРУШИ В УСЛОВИЯХ IN VITRO . Izdenister natigeler. 2026;28(1(109):115-123. doi:10.37884/1-2026/12